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葉下珠組培快繁體系研究

葉下珠組培快繁體系研究

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本研究通過組織培養,對葉下珠進行芽的誘導、增殖、生根和煉苗移栽等,建立了一套完整的葉下珠組培快繁體系,為葉下珠大規模繁殖提供技術參考。1材料與方法1.1材料福建省廈門市福建省亞熱帶植物研究所內種植的葉下珠Phyllanthusurinaria。1.2方法...

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詳細介紹
本研究通過組織培養,對葉下珠進行芽的誘導、增殖、生根和煉苗移栽等,建立了一套完整的葉下珠組培快繁體系,為葉下珠大規模繁殖提供技術參考。

  1 材料與方法

  1.1 材料

  福建省廈門市福建省亞熱帶植物研究所內種植的葉下珠Phyllanthus urinaria。

  1.2 方法

  1.2.1 培養條件 基本培養基為 MS,瓊脂 7.5 g·L-1,蔗糖為 30 g·L-1,pH 5.8~6.0。培養溫度(25 ± 1) ℃,光照時間12 h·d -1,光照強度1000~1500 lx。

  1.2.2 外植體接種 選取長勢均勻的葉下珠植株,用剪刀剪取位于植株中部的莖段,去除葉片與假葉柄。加1~2滴洗潔精將莖段表面洗刷干凈,流水沖洗5~6 h。于超凈工作臺上用75%酒精浸泡30 s,然后用0.1%升汞消毒13 min,無菌水沖洗5~6次,并用無菌濾紙擦干,置于接種盤上。用手術刀將外植體切成1.5~2 cm帶節莖段,生物學頂端朝上接種于培養基上。

  1.2.3 生長調節劑配比試驗 將消毒外植體接種到按單因素多水平設計的不同生長調節劑配比的、添加0.5 g·L-1活性炭的MS培養基中,共計7組,分別為:IBA為0.2 mg·L-1,6-BA分別為1.0、1.5、2.0、3.0 mg·L-1;6-BA 為 1.5 mg·L-1,IBA 分別為 0.1、0.2、0.5、1.0 mg·L-1 (表 1)。每組 15 瓶,每瓶接 1個外植體,每3 d觀察1次,15 d統計誘導情況。

  1.2.4 誘導培養基 得出芽誘導佳生長調節劑配方后,對比添加0.5 g·L-1活性炭的MS和1/2MS培養基的誘導效果,共2組,每組24瓶,每瓶接1個外植體,每4 d觀察1次,20 d后統計誘導情況。

  1.2.5 不同濃度6-BA對葉下珠芽的處理 將莖段誘導出的芽在超凈工作臺上切成1.5~2 cm帶芽莖段,接種至添加不同濃度6-BA的培養基中,共計3組,每處理5瓶,每瓶2個,即每處理10個外植體,每5 d觀察1次,25 d后統計芽增殖情況。

  1.2.6 不同濃度NAA與IBA對叢生芽的處理 將增殖擴繁的叢生芽在超凈工作臺上分成單個芽,接種至添加蔗糖20 g·L-1的不同培養基中,共計6組,每處理5瓶,每瓶10個芽,即每處理50個芽,每5 d觀察1次,25 d后統計生根、長勢情況。

  1.2.7 煉苗 將生根的瓶苗轉移至培養室外進行煉苗,處理時間設置見表5。煉苗后清水洗凈根部培養基,移栽至加水拌成泥狀的菜園土基質。栽培條件:自然光,氣溫25~30 ℃。移栽15 d后統計成活率。

  2 結果與分析

  2.1 不同生長調節劑配比對葉下珠芽誘導的影響

  從表1可知,不同濃度生長調節劑配比對葉下珠莖段誘導芽的影響效果不同。當IBA為0.2 mg·L-1時,誘導率先是隨6-BA濃度升高而升高,當6-BA濃度達2.0 mg·L-1后,呈現出隨6-BA濃度升高而降低的趨勢。當6-BA為1.5 mg·L-1時,誘導率隨IBA濃度升高呈降低的趨勢。當6-BA為2.0 mg·L-1,IBA 為 0.2 mg·L-1時,誘導率高,達到81.82%,芽的平均長度長,達到1.00 cm,故該配比可作為適宜的葉下珠莖節誘導芽生長調節劑配比。

  表1 生長調節劑對葉下珠芽誘導的影響


2.2 不同培養基對葉下珠芽誘導的影響

  從表2可知,當生長調節劑配方同為6-BA 2.0 mg·L-1,IBA 0.2 mg·L-1時,1/2MS 培養基比MS培養基的誘導率高,達100%,平均芽長也較長,達2.46 cm。因此,較適合葉下珠莖段誘導芽的培養基配方為 1/2MS +6-BA 2.0 mg·L-1 + IBA 0.2 mg·L-1 + 瓊脂7.5 g·L-1 + 蔗糖 30 g·L-1 + 活性炭 0.5 g·L-1。

  表2 不同培養基對葉下珠莖段誘芽的影響


2.3 不同濃度6-BA對葉下珠芽增殖的影響

  從表3可知,在相同IBA濃度下,6-BA濃度為1.0 mg·L-1時,芽平均增殖倍數達3.8,為本試驗大增殖倍數,小芽長勢也較好,可為后期研究提供良好的材料。因此,在本試驗中適合芽增殖的培養基配方為 1/2MS + 6-BA 1.0 mg·L-1+ IBA 0.2 mg·L-1 + 瓊脂7.5 g·L-1 + 蔗糖 30 g·L-1。

  表3 不同濃度6-BA對葉下珠芽增殖的影響
  
注:基本培養基為1/2MS。

  2.4 不同濃度NAA與IBA對叢生芽生根的影響

  從表4可知,NAA對葉下珠叢生芽生長、生根作用不佳。添加NAA后,植株瘦小,莖下部長滿紅色愈傷組織,根呈白色絨毛狀。IBA對葉下珠叢生芽生長、生根有明顯促進作用,在IBA為0.5 mg·L-1時,叢生芽生長快,植株綠色,較粗壯、健康,根系發達,主次根明顯(圖1)。但隨IBA濃度增加,叢生芽植株生長變緩,主次根區別不明顯。因此,較適合叢生芽生根的培養基為1/2MS + IBA 0.5 mg·L-1+ 瓊脂7.5 g·L-1 + 蔗糖20 g·L-1,此時叢生芽生長快,根系發達,生根率達100.00%。

  表4 不同濃度NAA與IBA對葉下珠叢生芽生根的影響


注:基本培養基為1/2MS;“-”表示差,“+”表示一般,“++”表示好,“+++”表示較好,“++++”表示好。

圖1 添加IBA 0.5 mg·L-1的誘導苗長勢及生根(25 d)

  2.5 不同煉苗時間對葉下珠瓶苗移栽的影響

  從表5可見,不經煉苗直接移栽,成活率為60.00%,經過適當煉苗可提高移栽的成活率;煉苗時間不宜太長,若開蓋太長,瓶苗內的培養基長菌,對瓶苗造成傷害;若整體煉苗時間太長,瓶苗自身易失水,不利于移栽,導致成活率低。因此,較適合葉下珠組培苗的煉苗方式為室外閉蓋煉苗 2 d,開蓋煉苗3 d,移栽成活率達86.67%。

  表5 不同煉苗時間對移栽成活率的影響


3 討論

  葉下珠的主要藥理活性成分柯里拉京是一種多酚類物質,極容易氧化。在外植體誘導叢生芽的過程中,莖節的切口會分泌大量次生代謝產物,導致外植體褐化,降低組培成功率。外植體褐化程度高,需通過多次轉接以避免褐化,但是多次轉接易造成污染。本試驗通過添加活性炭以吸收次生代謝物,抑制褐化效果良好,也減少人為操作帶來的污染。

  在芽增殖試驗中,1.0 mg·L-1 6-BA 和0.2 mg·L-1 IBA的生長調節劑組合是較適合芽增殖的生長調節劑配比,這與研究結果相近,但他們認為芽增殖中6-BA佳濃度為2.0 mg·L-1。本研究中6-BA濃度為1.0、1.5、2.0 mg·L-1的芽增殖系數均達3倍以上,并以1.0 mg·L-1時增殖倍數大,小芽長勢好。

  在煉苗移栽研究中,基質為泥狀菜園土。泥狀土在栽培初期水分飽滿,但后期易結塊,對組培苗成活率造成一定影響。可適當添加一定比例的有機土進行改良,調整土壤疏松度,以利于移栽苗成活。【本文章內容來源于網絡,如有侵權請告知!我們立即刪除】